細(xì)胞裂解與蛋白質(zhì)定量

更新時間：2014-09-20

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細(xì)胞裂解與蛋白質(zhì)定量

Solarbio提供的細(xì)胞裂解液：

貨號	R0010	R0020	R0030
名稱	RIPA組織細(xì)胞裂解液	RIPA組織細(xì)胞裂解液	非變性組織細(xì)胞裂解液
有效裂解成分	SDS，NP-40，脫氧膽酸鈉，	1% NP-40，0.1% SDS	NP-40，Triton X-100
裂解強(qiáng)度	強(qiáng)	中	溫和
蛋白酶抑制劑	含, 配有PMSF	含，配有PMSF	含，配有PMSF
產(chǎn)物	細(xì)胞總蛋白	細(xì)胞總蛋白	細(xì)胞總蛋白
蛋白狀態(tài)	變性	變性	保持活性狀態(tài)
主要用途	WB、IP	WB、IP	WB, IP,co-IP

本系列試劑隨同配送一支PMSF，請收到后-20℃保存。RIPA裂解液4℃保存，如發(fā)現(xiàn)有少量沉淀，可常溫放置半小時，沉淀可消失，不影響使用。

使用裂解液在提取核蛋白的同時，也會將基因組一并釋放出來，細(xì)胞量高時會造成細(xì)胞裂解液粘稠，此時可以直接加入蛋白上樣緩沖液，煮沸再離心，離心取上清直接上樣電泳；若想測定濃度，可入加少量SDS（1%），煮沸后離心測濃度。本系列蛋白提取試劑所提取的蛋白由于含有去污劑，所以不適合使用Bradford蛋白濃度測定試劑盒，請選擇BCA法或者Lowry法檢測蛋白濃度。

如果需要檢測和基因組結(jié)合特別緊密的蛋白，則可以通過超聲處理打碎打散粘稠狀物，隨后離心取上清用于后續(xù)實驗。

蛋白質(zhì)定量：

蛋白含量測定是以標(biāo)準(zhǔn)蛋白作為對照，根據(jù)蛋白濃度不同，吸光值不同而達(dá)到定量的目的。有些方法是理解蛋白本身的吸光值（紫外光譜吸收法）來定量，但更多的是用染料對蛋白進(jìn)行染色，利用染料與蛋白結(jié)合顯出與原染料及蛋白不同的吸光值來定量的。后一種方法應(yīng)用更普遍。

蛋白定量方法的選擇，應(yīng)該考慮到蛋白結(jié)構(gòu)（標(biāo)準(zhǔn)品選擇）、蛋白溶液內(nèi)干擾物等因素的影響。

	Bradford法	BCA法	Lowry法
原理	考馬斯亮藍(lán)G-250與蛋白質(zhì)結(jié)合呈藍(lán)色，在波長595nm吸收峰	基于雙縮脲原理，堿性條件下蛋白質(zhì)將Cu²⁺還原成Cu1⁺，BCA螯合Cu⁺作為顯色劑，產(chǎn)生蘭紫色并在562nm有吸收峰。	Folin－酚法，蛋白質(zhì)在堿性溶液中肽鍵與Cu²⁺螯合，形成蛋白質(zhì)一銅復(fù)合物，還原酚磷鉬酸產(chǎn)生藍(lán)色化合物。
靈敏性	高微量:1-10ug/ml, 常規(guī)：100-1500ug/ml	很高微量:0.5-20μg/ml 常規(guī)：20-2000ug/ml	較高 1-1500ug/ml
干擾因素	強(qiáng)堿性緩沖液 TritonX-100 SDS等去污劑	螯合劑略高濃度的還原劑（優(yōu)勢：耐受一般濃度去污劑）	硫酸銨；Tris緩沖液甘氨酸、各種硫醇（優(yōu)勢：適用于脂類含量高的樣品測定。耐受去垢劑如SDS）
應(yīng)用	快速5-15min 顏色穩(wěn)定標(biāo)準(zhǔn)曲線有輕微的非線性	較快40min 較好的方法抗干擾能力強(qiáng)	耗費時間長50min 操作要嚴(yán)格計時顏色深淺隨不同蛋白質(zhì)變化標(biāo)準(zhǔn)曲線線性差且專一性差

考馬斯亮蘭G-250染料，在酸性溶液中與蛋白質(zhì)結(jié)合，使染料的大吸收峰的位置（lmax），由465nm變?yōu)?95nm，溶液的顏色也由棕黑色變?yōu)樘m色。經(jīng)研究認(rèn)為，染料主要是與蛋白質(zhì)中的堿性氨基酸（特別是精氨酸）和芳香族氨基酸殘基相結(jié)合。測定快速、簡便，只需加一種試劑。完成一個樣品的測定，只需要5分鐘左右。由于染料與蛋白質(zhì)結(jié)合的過程，大約只要2分鐘即可完成，其顏色可以在1小時內(nèi)保持穩(wěn)定，且在5分鐘20分鐘之間，顏色的穩(wěn)定性好。由于各種蛋白質(zhì)中的精氨酸和芳香族氨基酸的含量不同，因此Bradford法用于不同蛋白質(zhì)測定時有較大的偏差。去污劑、 Triton X-100、十二烷基硫酸鈉（SDS）干擾此法的測定。

BCA（bicinchoninic acid）是理想的蛋白質(zhì)定量方法。該方法因快速靈敏、穩(wěn)定可靠，對不同種類蛋白質(zhì)檢測的變異系數(shù)非常小而倍備受專業(yè)人士的青睞。該方法的原理是，在堿性條件下，蛋白將Cu2+還原為Cu+，Cu+與BCA試劑形成紫色的絡(luò)合物，測定其在562nm處的吸收值，并與標(biāo)準(zhǔn)曲線對比，即可計算待測蛋白的濃度。BCA法測定蛋白濃度不受絕大部分樣品中的化學(xué)物質(zhì)的影響。在組織細(xì)胞裂解實驗中，低濃度的去垢劑SDS，Triton X-100，Tween不影響檢測結(jié)果，但螯合劑（EDTA，EGTA）、還原劑（DTT，巰基乙醇）和脂類會對檢測結(jié)果有一定影響。實驗中，若發(fā)現(xiàn)樣品稀釋液或裂解液本身背景值較高，可試用Bradford法測定蛋白濃度。

Lowry法蛋白質(zhì)測定法是靈敏的方法之一。過去此法是應(yīng)用廣泛的一種方法，在堿性條件下，蛋白質(zhì)中的肽鍵與銅結(jié)合生成復(fù)合物。 Folin—酚試劑中的磷鉬酸鹽—磷鎢酸鹽被蛋白質(zhì)中的酪氨酸和苯丙氨酸殘基還原，產(chǎn)生深蘭色（鉬蘭和鎢蘭的混合物）。在一定的條件下，蘭色深度與蛋白的量成正比。這個測定法的優(yōu)點是靈敏度高，缺點是費時間較長，要控制操作時間，標(biāo)準(zhǔn)曲線也不是嚴(yán)格的直線形式，且專一性較差，干擾物質(zhì)較多。