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    活性氧檢測試劑盒的操作方法講解
      今天我給大家講講活性氧檢測試劑盒的操作方法:
     
      1. 裝載探針 對于刺激時間較短(通常為2小時以內)的細胞,先裝載探針,后用活性氧陽性對照或自己感興趣的藥物刺激細胞。對于細胞刺激時間較長(通常為6小時以上)的細胞,先用活性氧陽性對照或自己感興趣的藥物刺激細胞,后裝載探針。 原位裝載探針:本方法僅適用于貼壁培養細胞。按照1:1000用無血清培養液稀釋DCFH-DA,使終濃度為10微摩爾/升。去除細胞培養液,加入適當體積稀釋好的DCFH-DA。加入的體積以能充分蓋住細胞為宜,通常對于六孔板的一個孔加入稀釋好的DCFH-DA不少于1毫升。37℃細胞培養箱內孵育20分鐘。用無血清細胞培養液洗滌細胞三次,以充分去除未進入細胞內的DCFH-DA。通常活性氧陽性對照在刺激細胞20-30分鐘后可以顯著提高活性氧水平。
     
      收集細胞后裝載探針:按照1:1000用無血清培養液稀釋DCFH-DA,使終濃度為10微摩爾/升。細胞收集后懸浮于稀釋好的DCFH-DA中,細胞濃度為一百萬二千萬/毫升,37℃細胞培養箱內孵育20分鐘。每隔3-5分鐘顛倒混勻一下,使探針和細胞充分接觸。用無血清細胞培養液洗滌細胞三次,以充分去除未進入細胞內的DCFH-DA。直接用活性氧陽性對照或自己感興趣的藥物刺激細胞,或把細胞等分成若干份后刺激細胞。通常活性氧陽性對照在刺激細胞20-30分鐘后可以顯著提高活性氧水平。 說明:僅在陽性對照孔中加入Rosup作為陽性對照,其余孔不必加入Rosup。
     
      2. 檢測 對于原位裝載探針的樣品可以用激光共聚焦顯微鏡直接觀察,或收集細胞后用熒光分光光度計、熒光酶標儀或流式細胞儀檢測。對于收集細胞后裝載探針的樣品可以用熒光分光光度計、熒光酶標儀或流式細胞儀檢測,用激光共聚焦顯微鏡直接觀察也可以。
     
      3. 參數設置 使用488nm激發波長,525nm發射波長,實時或逐時間點檢測刺激前后熒光的強弱。DCF的熒光光譜和FITC非常相似,可以用FITC的參數設置檢測DCF。
     
      4. 其它說明 陽性對照可以按照1:1000的比例使用。例如裝載好探針的細胞共1毫升,可以加入1微升的陽性對照刺激。通常刺激后20-30分鐘內可以觀察到非常顯著的活性氧水平升高。對于不同的細胞,活性氧陽性對照的效果可能有較大的差別。如果在刺激后30分鐘內觀察不到活性氧的升高,可以適當提高活性氧陽性對照的濃度。如果活性氧升高得過快,可以適當降低活性氧陽性對照的濃度。 另外,對于某些細胞,如果發現沒有刺激的陰性對照細胞熒光也比較強,可以按照1:2000-1:5000稀釋DCFH-DA,使裝載探針時DCFH-DA的濃度為2-5微摩爾/升。探針裝載的時間也可以根據情況在15-60分鐘內適當進行調整。
     
      活性氧陽性對照(Rosup)僅僅用于作為陽性對照的樣品,并不是在每個樣品中都需加入活性氧陽性對照。

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